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Mar 14, 2023

La codifica del tatto mediante suddivisioni della colonna dorsale allineate somatotopicamente

Dec 30, 2023Dec 30, 2023

Natura volume 612, pagine 310–315 (2022)Citare questo articolo

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Dettagli sulle metriche

Il sistema somatosensoriale decodifica una serie di stimoli tattili per generare un senso del tatto coerente. Il tocco discriminativo del corpo dipende dai segnali trasmessi dai meccanorecettori periferici al cervello attraverso la colonna dorsale del midollo spinale e il suo bersaglio nel tronco encefalico, i nuclei della colonna dorsale (DCN)1,2. I modelli di somatosensazione sottolineano che i meccanorecettori a bassa soglia (LTMR) a conduzione rapida che innervano la pelle guidano il DCN3,4. Tuttavia, i neuroni della colonna dorsale postsinaptica (PSDC) all'interno del corno dorsale del midollo spinale raccolgono anche i segnali dei meccanorecettori e formano un secondo input principale al DCN5,6,7. Il significato dei neuroni PSDC e il loro contributo alla codifica del tatto sono rimasti poco chiari sin dalla loro scoperta. Qui mostriamo che l'input diretto LTMR al DCN trasmette stimoli vibrotattili con elevata precisione temporale. Al contrario, i neuroni PSDC codificano principalmente l’inizio del tocco e l’intensità del contatto prolungato nella gamma della forza elevata. I segnali LTMR e PSDC si riallineano topograficamente nella DCN per preservare dettagli spaziali precisi. Diversi sottotipi di neuroni DCN hanno risposte specializzate generate da combinazioni distinte di input LTMR e PSDC. Pertanto, le suddivisioni LTMR e PSDC della colonna dorsale codificano diverse caratteristiche tattili e convergono differenzialmente nel DCN per generare specifici flussi di elaborazione sensoriale ascendente.

Gli LTMR a conduzione rapida (Aβ-LTMR) rilevano le forze meccaniche leggere che agiscono sulla pelle e mediano il tocco discriminativo8,9,10,11. I segnali Aβ-LTMR vengono rapidamente trasportati dalla periferia e i loro assoni salgono lungo la colonna dorsale del midollo spinale e contattano direttamente il DCN del tronco encefalico. Dal DCN, le informazioni meccanosensoriali vengono trasmesse a più target nelle regioni cerebrali superiori. La maggior parte delle informazioni sensoriali viene trasmessa dal DCN alla corteccia somatosensoriale attraverso una proiezione prominente al talamo somatosensoriale ventrale posterolaterale (VPL) per la percezione cosciente del tatto. Una popolazione separata e meno conosciuta di neuroni DCN trasmette informazioni tattili alla corteccia esterna del collicolo inferiore (IC)12,13. In questa regione del cervello l'informazione viene integrata e contestualizzata con l'informazione uditiva. Altre popolazioni di neuroni DCN proiettano al sistema olivocerebellare14,15 per coordinare l'adattamento motorio. I neuroni DCN possono anche proiettare ai nuclei talamici secondari16 coinvolti nello stato affettivo, al midollo spinale e al grigio periacqueduttale14,16. Pertanto, il DCN è un condotto di segnali meccanosensoriali in entrata e collega ampiamente i meccanorecettori nella periferia a diverse aree principali del cervello17.

La codifica somatosensoriale nei neuroni DCN è eterogenea18,19,20,21, ma il modo in cui i segnali tattili sono organizzati all'interno del DCN e distribuiti ai bersagli a valle rimane sconosciuto. Utilizzando i topi, abbiamo cercato di determinare come le rappresentazioni sensoriali degli arti posteriori siano codificate in questa fase iniziale della gerarchia somatosensoriale. Per raggiungere questo obiettivo, abbiamo registrato selettivamente i sottotipi di neuroni nel DCN (il nucleo gracile; Dati estesi Fig. 1) nei topi utilizzando l'attivazione antidromica e il tagging optogenetico.

Diversi tipi di neuroni DCN codificavano aspetti distinti degli stimoli meccanosensoriali adatti ai loro obiettivi di proiezione. I neuroni di proiezione VPL (VPL-PN) sono il tipo cellulare più abbondante nella DCN, superando in numero i neuroni di proiezione IC (IC-PN) e gli interneuroni inibitori locali (VGAT-IN) con una proporzione stimata di VPL-PN:IC-PN:VGAT -IN di 2:1:1 (rif. 13). I VPL-PN avevano piccoli campi recettivi eccitatori con ampie regioni di soppressione surround (Fig. 1a-c,pq). Questi VPL-PN potrebbero sottoporre il loro fuoco a vibrazioni meccaniche; tuttavia, per la maggior parte, questo trascinamento era limitato a una gamma ristretta di frequenze inferiori a 150 Hz (Fig. 1c,d). I neuroni DCN che proiettano all'IC potrebbero essere classificati in diversi sottogruppi (Dati estesi, Fig. 2), ma più comunemente avevano campi recettivi ampi ed esclusivamente eccitatori che includevano l'intero arto posteriore (Fig. 1f-h, p). A differenza dei VPL-PN, la maggior parte degli IC-PN potrebbe trasmettere la propria accensione alla vibrazione meccanica attraverso un'ampia gamma di frequenze (Fig. 1h-i). La vibrazione degli arti posteriori evocava potenziali d'azione temporizzati con precisione che erano trascinati e bloccati in fase in vibrazioni che variavano da 10 Hz fino a 500 Hz, la frequenza più alta testata. Pertanto, i neuroni che proiettano al VPL sono sintonizzati per trasmettere informazioni spaziali finemente dettagliate. Al contrario, i neuroni che proiettano all’IC codificano scarsamente i dettagli spaziali e sono più adatti a codificare un’ampia gamma di vibrazioni meccaniche che possono essere correlate con gli stimoli uditivi. I VGAT-IN avevano un'ampia gamma di dimensioni del campo recettivo, mancavano di bordi inibitori e, a differenza dei PN, in genere mancavano di attivazione spontanea (Fig. 1k-n,p-r). Tutti e tre i tipi di cellule DCN si sono rapidamente adattati alle rientranze dei gradini a basse forze (Fig. 1e,j,o). In contrasto con altri tipi di cellule, i VPL-PN codificavano in modo più affidabile la fase statica di indentazione sostenuta ad alta forza, sostanzialmente al di sopra delle forze alle quali gli Aβ-LTMR ad adattamento rapido e ad adattamento lento si stabilizzano22,23,24,25 (Fig. 1e).

5 weeks) of both sexes. The following mouse lines were used: C57Bl/J6; Cdx2cre (ref. 48); Calca-FlpE (ref. 49); AvilFlpO (ref. 49); Avilcre (ref. 50); Rosa26LSL-Acr1 (ref. 51); and Rosa26FSF-ReaChR (derived from ref. 52). Animals were maintained on mixed C57Bl/J6 and 129S1/SvImJ backgrounds. C57Bl/J6 mice were obtained from The Jackson Laboratory./p>5 weeks) animals were anaesthetized with urethane (1.5 g kg–1) and placed on a heating pad. The head and neck were shaved and local anaesthesia (lidocaine HCl, 2%) was administered to the scalp and neck. An incision was made in the skin, and the muscle of the dorsal aspect of the neck was cut and moved aside to expose the brainstem. A head plate was attached to the skull using dental cement and the head was fixed to a custom-built frame. The dura overlying the brainstem was cut and small fragments of the occipital bone were removed. In some cases in which optical access to the DCN was required, small amounts of the posterior vermis of the cerebellum were aspirated to expose the DCN. A glass electrode filled with saline (2–3 MΩ) was put in place 200–300 µm above the gracile nucleus. The area was then flooded with low-melting point agarose dissolved in saline. After the agarose hardened, the electrode was advanced into the gracile. The electrode was guided to individual units and positioned to maximize the signal of a single unit. Recording quality and unit discrimination were continuously assessed using an audio monitor and online analysis of amplitude and spike waveforms. All recordings in the DCN were made in the hindlimb representation region of the gracile nucleus, and only units with receptive fields in the hindlimb were recorded. Recordings were targeted to the rostral–caudal level approximately where the gracile diverges bilaterally (see example in Extended Data Fig. 1) where units receiving input from the hindlimb digits and pads were most abundant. Although it has been reported that the gracile in rats, cats and primates is subdivided into ‘core’ and ‘shell’ regions, we were unable to detect clear organization in the mouse through electrophysiology experiments. Signals from single units were amplified using the ×100 AC differential amplification mode of a Multiclamp 700B instrument and sampled at 20 kHz using a Digidata 1550B controlled by Clampex 11 software (Molecular Devices). Signals were collected with an additional 20× gain, a 0.3 kHz high-pass filter and a 3 kHz Bessel filter./p>10 mN) at baseline and became mechanically insensitive following DCN lesion were not included for analysis because the stimulus may have been off the centre of the receptive field./p>

300 Hz and often up to 500 Hz), and do not have inhibitory surrounds. The broad receptive field and entrainment to high frequencies suggest that they receive strong input from Pacinian corpuscles. Spatially-tuned (ST) units have small receptive fields, typically consisting of 1-2 digits or pads, or a small portion of the heel. They often have inhibitory surrounds, and can entrain their firing to modest vibration frequencies (up to 100–200 Hz). These units cannot entrain their firing to vibration frequencies > 300 Hz, even at high forces. Contact-tuned (CT) units have receptive field sizes similar to spatially-tuned units, but are poorly activated by vibration. They are very sensitive and almost exclusively responsive to the initial contact of a stimulus. a, Example receptive field of a vibration-tuned IC-PN. Color scale of normalized firing rate shown at bottom. b, Example rasters of a vibration-tuned IC-PN unit in response to 50 (top) or 500 Hz (bottom) vibration. c, Responsiveness of vibration-tuned IC-PN units to different vibration frequencies (10–20 mN). Data is shown for individual units (gray) and average across units (black). d–g, Vibration-tuned units had different sensitivities to different frequencies of vibration. When reducing the force of vibrations to near-threshold (<10 mN), 300 Hz vibrations evoked more robust responses in the heel, whereas 10 Hz vibrations typically only evoked responses when stimulating the digits. d, Receptive field map of near-threshold 300 Hz vibration for an identified vibration-tuned IC-PN (left). Example trials from the heel (top right) and digits (top left) are shown. Color scale of normalized firing rate shown at bottom. e, Same as in d, but for 10 Hz near-threshold vibration. Color scale of normalized firing rate shown at bottom. f, Average histograms for individual units of near-threshold 300 Hz vibration delivered to the heel (top) or digits (bottom). Color scale of Z-scores shown at right. g, Average histograms for individual units of near-threshold 10 Hz vibration delivered to the heel (top) or digits (bottom). Color scale of Z-scores shown at right. h–j, Same as a-c, but for spatially-tuned units. k–m, Same as a–c, but for contact-tuned units. n, Distribution of functional types for units antidromically activated from the IC. o, Functional types were generalized to classify VPL-PNs. Units antidromically activated from the VPL were almost all spatially-tuned. Their receptive fields were small and did not phase-lock to high frequency vibration (>300 Hz), even when increasing the amplitude. These units also typically did not elevate their firing in response to high-frequency vibration. 1/39 units were found to be vibration-tuned. p, Receptive field area for spatially-tuned units antidromically activated from the IC or VPL. Distributions are significantly different (p = 0.031, Kolmogorov-Smirnov test). Individual units (gray) and mean ± s.e.m. (black). q, Proportion of units with inhibitory surrounds for each functional type. All data shown as n units in N animals (n/N)./p>

300 Hz) vibration, even at high forces. a, Top: Traces of single control and silencing trials. A 100 ms, 50 Hz, 10 mN vibration was applied. Timing of light delivery is denoted by a green ramp. Middle: Raster of trials for 50 Hz vibration. Control and light trials are separated by a dashed green line. Bottom: Average histogram for this unit when light was off (Control) or on (+Light). Time 0 is the onset of vibration. Bins are 1 ms. b, Same unit as in a, but for a 200 ms 10 Hz 10 mN vibration. c, Same unit as in a and b, but for a 200 ms 10 mN indentation. d-f, A DCN unit that was antidromically activated from the IC. This unit entrained to 300 Hz vibratory stimuli and had a large receptive field. d, Top: Traces of single control and silencing trials. A 100 ms, 300 Hz, 10 mN vibration was applied. Middle: Raster of trials for 300 Hz vibration. Control and light trials are separated by a dashed green line. Bottom: Average histogram for this unit when light was off (Control) or on (+Light). Time 0 is the onset of vibration. Bins are 1 ms. e, Same unit as in d, but for a 200 ms 10 Hz 10 mN vibration. f, Same unit as in d and e, but for a 200 ms 10 mN indentation./p>

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